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Calculadora de massa de dsDNA para concentração molar

Esta calculadora converte uma concentração de DNA de fita dupla, como ng/µL, em mol/L, µM, nM e pM.

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Ela usa o número de pares de bases e a massa molecular média por par, com padrão de 660 g/mol por bp. O resultado ajuda você a preparar diluições, normalizar amostras, comparar construções de extensões diferentes e obter entradas baseadas em moléculas a partir de medições de massa. Você pode alterar a massa média quando seu protocolo ou modelo exigir outra premissa.

Informe a concentração em massa e a extensão correta

Comece pela concentração em massa medida do DNA de fita dupla e selecione a unidade correspondente. São aceitos ng/µL, µg/mL, mg/mL e g/L, todos normalizados para gramas por litro. Depois informe, como inteiro positivo, a extensão de uma molécula em pares de bases. Inclua vetor, inserto, adaptadores e qualquer outro trecho de fita dupla presente em cada molécula. Um plasmídeo de 5,000 bp deve ser informado como 5000, e não apenas pela extensão de uma região. A extensão é decisiva porque massas iguais de DNA curto e longo contêm quantidades diferentes de moléculas; quanto menor a molécula, maior sua molaridade para a mesma massa. A massa pode ser zero, mas o número de pares de bases precisa ser positivo. Valores não finitos, contagens fracionárias, concentrações negativas e unidades incompatíveis são rejeitados para impedir resultados aparentemente válidos a partir de dados incorretos.

Entenda a aproximação e a fórmula

O cálculo estima primeiro a massa molecular de uma molécula multiplicando o número de pares de bases pela massa média de cada par. O padrão de 660 g/mol por bp é uma aproximação comum para DNA de fita dupla. Assim, uma construção de 5,000 bp tem massa estimada de 3,300,000 g/mol. A molaridade é a concentração em g/L dividida por essa massa em g/mol, resultando em mol/L; a resposta também apresenta µM, nM e pM. Por exemplo, 50 ng/µL equivalem a 0.05 g/L e, para 5,000 bp, resultam em cerca de 1.515 × 10^-8 mol/L ou 15.15 nM. Como 660 é uma média, e não uma massa exata calculada pela sequência, você pode substituí-la quando um kit ou método especificar outro valor. A resposta informa a premissa e a massa molecular total, permitindo auditar a conversão.

Use o resultado com critério no laboratório

Use a molaridade retornada para comparar construções pelo número de moléculas, planejar pools equimolares, calcular diluições ou converter uma medição fluorométrica para protocolos de ligação e sequenciamento. Confirme que todas as entradas sejam DNA de fita dupla e que a extensão represente a forma molecular real. A ferramenta não mede concentração, não infere extensão, não analisa sequências, não corrige pureza e não modela distribuições de fragmentos. Para DNA fragmentado, uma extensão média ou modal produz apenas uma aproximação que deve ser registrada. Leituras por absorbância podem incluir contaminantes, e modificações incomuns podem exigir outra massa média. Portanto, a precisão depende da medição, da extensão e da premissa fornecidas. O algoritmo é determinístico, não acessa a rede e sempre repete o resultado para a mesma entrada. O navegador e a API usam o mesmo cálculo; cada solicitação automatizada válida custa US$ 0,002.

Preparar um pool equimolar de plasmídeos

Converta cada concentração medida com a extensão completa do plasmídeo antes de definir os volumes.

Planejar uma diluição de DNA

Transforme ng/µL em nM ou pM para diluir o estoque até a concentração molecular exigida.

Normalizar amplicons de tamanhos diferentes

Compare amplicons em base molar para que produtos longos não predominem apenas pela massa maior.

Qual fórmula é usada?

A massa é convertida em g/L, a massa molecular é pares de bases vezes massa média, e g/L é dividido por g/mol para obter mol/L.

Por que o padrão é 660 g/mol por par?

É uma aproximação média comum para DNA de fita dupla. Composição e modificações alteram a massa exata, por isso o valor pode ser trocado.

Posso usar para DNA de fita simples ou RNA?

Não. O modelo padrão é específico para pares de bases de DNA de fita dupla; outros ácidos nucleicos exigem premissas diferentes.

Quais unidades de concentração são aceitas?

São aceitos ng/µL, µg/mL, mg/mL e g/L, informados como ng/uL, ug/mL, mg/mL e g/L.

Qual extensão devo usar para DNA fragmentado?

Use uma extensão representativa somente se uma aproximação for suficiente; uma distribuição não tem uma única molaridade exata neste modelo.

Quanto custa usar a API?

Cada solicitação válida da API custa US$ 0,002. O cálculo também pode ser executado no navegador.

Tudo nesta página está disponível via API. Esta seção é para equipes que querem integrar a ferramenta aos próprios sistemas; quem não precisa disso pode simplesmente usar a ferramenta acima.

POSThttps://api.kit.forhosting.com/bio/dsdna-mass-to-molar

Autenticação por token Bearer. Um único POST coloca a tarefa na fila; o resultado chega por webhook ou link assinado.

curl -X POST https://api.kit.forhosting.com/bio/dsdna-mass-to-molar \
  -H "Authorization: Bearer $KIT_KEY" \
  -H "Content-Type: application/json" \
  -d '{"mass_concentration":50,"base_pairs":5000}'
{
  "mass_concentration": 50,
  "base_pairs": 5000
}
{
  "task_id": "tsk_a1b2c3d4e5f6a1b2c3d4e5f6",
  "type": "bio.dsdna_mass_to_molar",
  "status": "queued",
  "_links": {
    "result": "/tasks/tsk_…/result"
  }
}

A API é assíncrona: cada chamada devolve um task_id na hora. Se preferir polling, consulte o status a até 1 requisição por segundo.

por chamadaUS$ 0,002

Preço publicado, sem tokens nem créditos escondidos. Tarefa que falha não é cobrada.

max_base_pairs1000000000000
max_mass_concentration1000000000000
max_average_bp_molecular_weight1000000
HTTPCódigoO que significa
401unauthorizedToken ausente ou inválido. Confira o header Authorization.
402insufficient_balanceSaldo insuficiente para esta tarefa. Faça uma recarga e tente de novo.
404unknown_typeEsse tipo de tarefa não existe. Confira o campo type no catálogo.
429rate_limitedMuitas requisições em pouco tempo. Espere um instante e tente de novo.

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